приобретение устойчивости к дезинфектантам характерно для каких возбудителей
Устойчивость микроорганизмов к дезинфектантам
Устойчивость микроорганизмов к дезинфектантам – это невосприимчивость их клеточных мембран к дезинфицирующему веществу в определенной концентрации. При столкновении с такими реагентами микроорганизмы не просто выживают. Они сохраняют полноценную способность к росту и размножению.
Почему формируется устойчивость к дезинфектантам?
Низшие микроорганизмы изначально имеют больше возможностей подстроиться под условия окружающей среды. Чтобы определенные свойства появились в организме человека или животного, понадобится несколько поколений. Бактерия, пытаясь выжить, на протяжении своего жизненного цикла может несколько раз менять особенности строения.
Такая устойчивость называется приобретенной. Бывает еще врожденная, изначально свойственная конкретной группе микроорганизмов.
Чем чаще контакт, тем выше резистентность
Устойчивость к дезинфектантам может формироваться в случае, если помещение обработано не полностью или применялся антисептик слабой концентрации. Погибает ничтожный процент микроорганизмов, у остальных начинает формироваться устойчивость к действующему веществу. Если проводить дезинфекцию от плесени в лечебном учреждении и жилой квартире, в первом случае эффективность будет ниже. Клетки обитающих здесь колоний чаще сталкиваются с различными антисептиками и формируют устойчивость к большинству из них.
Комплексный подход к уничтожению патогенов
Компания ООО «Санэпидсервис в ЮВАО» выполняет все виды работ по дезинфекции помещений. В работе мы используем несколько методов:
Специалисты компании выбирают наиболее подходящий способ, учитывая тип помещения и характер заражения. Это позволяет сделать процесс дезинфекции максимально безопасным для людей, которые после обработки будут находиться в помещении.
В разделе » Устойчивость микроорганизмов к дезинфектантам » на данный момент информация не опубликована.
тесты для подтверждения категории рентгенолаборантов с ответами. тесты для подтверждения категории рентгенолаборантов. Рентгенолаборанты Выберите один правильный ответ. В начале рабочего дня рентгенолаборант должен
Выберите один правильный ответ:
1. Целью дезинфекции является уничтожение
а) всех микроорганизмов
в) вегетативных микроорганизмов
г) споровых форм микроорганизмов
Выберите один правильный ответ:
2. К видам дезинфекции относят
а) механическую и биологическую
б) физическую и химическую
в) профилактическую и очаговую
г) заключительную и генеральную
Выберите один правильный ответ:
3. Основную долю возбудителей ВБИ составляют
а) патогенные бактерии
б) условно-патогенные бактерии
Выберите один правильный ответ:
4. Для генеральной и текущей уборок предпочтительно использовать препараты, обладающие свойствами
а) только дезинфицирующими
б) дезинфицирующими и моющими
г) моющими и дезодорирующими
Выберите один правильный ответ:
5. Все отходы ЛПО по степени опасности делят на
Выберите один правильный ответ:
6.При попадании крови пациента на кожные покровы медицинского персонала проводится обработка
а) 70% этиловым спиртом
б) 96% этиловым спиртом
г) 3% перекисью водорода
Выберите один правильный ответ:
г) согласно требованиям инструкции на данный вид упаковки
Выберите один правильный ответ:
8. Контроль стерильности изделий медицинского назначения проводится методом
б) биологическим (посев на питательные среды)
Выберите один правильный ответ:
9. Гигиеническая обработка пациентов стационара ЛПО должна проводиться не реже 1 раза в
Выберите один правильный ответ:
10. Для контроля качества дезинфекции
а) делают смывы с различных поверхностей с последующим посевом на питательные среды
б) ставят азопирамовую пробу
в) ставят фенолфталеиновую пробу
г) используют химические индикаторы
Выберите один правильный ответ:
11. Физический контроль режима стерилизации предусматривает:
а) использование индикаторов
б) контроль работы приборов стерилизатора
в) использование биотестов
г) контроль влажности обработанных изделий
Выберите один правильный ответ:
12. Мероприятия по профилактике ВБИ, направленные на обезвреживание источника инфекции
в) выявление и изоляция инфекционных больных и носителей
г) сбор и утилизация медицинских отходов
Выберите один правильный ответ:
13. Свойство дезинфицирующего средства, обеспечивающее уничтожение грибов
Выберите один правильный ответ:
14. Изделия медицинского назначения, не содержащие жизнеспособных микроорганизмов, но содержащие споры, считаются
Выберите один правильный ответ:
15. Температура моющего раствора «Биолот» для ручной предстерилизационной очистки инструментов
Выберите один правильный ответ:
16. Целью предстерилизационной очистки медицинского инструментария является
а) удаление различных загрязнений и остатков лекарственных средств
б) уничтожение только патогенных микробов
в) уничтожение патогенных и условно-патогенных микробов
г) уничтожение всех микробов и их спор
Выберите один правильный ответ:
17. К методам дезинфекции относят
а) генеральную и текущую уборки
б) физическую и химическую
в) профилактическую и очаговую
г) текущую и заключительную
Выберите один правильный ответ:
18.Приобретение устойчивости к дезинфектантам характерно для возбудителей
Выберите один правильный ответ:
19. После проведения инвазивных процедур медицинские изделия необходимо продезинфицировать по режимам для инфекций
г) вызванных простейшими
Выберите один правильный ответ:
20. Медицинские отходы, загрязненные биологическими жидкостями пациентов, в том числе кровью, относятся к классу
Выберите два правильных ответа:
21. К очаговой дезинфекции относят
Выберите один правильный ответ:
22. На стерильном столе, накрытом простынями, срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных без упаковки
а) должны быть использованы непосредственно после стерилизации в течение 4-6 часов
Выберите один правильный ответ:
Выберите один правильный ответ:
24. Повторный осмотр пациентов с педикулезом после обработки проводится через
Выберите один правильный ответ:
25. Генеральная уборка в отделениях высокого риска проводится дезинфицирующими средствами в концентрациях для профилактики инфекций
г) вызванных простейшими
Выберите один правильный ответ:
26. Контроль стерильности изделий медицинского назначения проводят
а) посевом смывов с простерилизованных изделий на питательные среды
б) использованием биотестов с культурами споровых микробов
в) химическими индикаторами
г) физическим методом
Выберите два правильных ответа:
27.Мероприятия по профилактике ВБИ, направленные на разрыв путей передачи
в) выявление и изоляция инфекционных больных и носителей
г) сбор и утилизация медицинских отходов
Выберите один правильный ответ:
28.Изделия медицинского назначения, не содержащие жизнеспособных микроорганизмов и спор, считаются
Выберите один правильный ответ:
29.Свойство дезинфицирующего средства, обеспечивающее уничтожение вирусов
Выберите один правильный ответ:
30.При проведении ручной предстерилизационной очистки обрабатываемое изделие погружают в раствор «Биолот» на
Выберите один правильный ответ:
31. Целью стерилизации является уничтожение на изделиях медицинского назначения
а) всех микробов и их спор
б) только патогенных микробов
в) только условно-патогенных микробов
г) и патогенных, и условно-патогенных микробов
Выберите два правильных ответа:
а) химический и физический
б) профилактический и текущий
в) погружение и орошение
г) облучение и протирание
Выберите один правильный ответ:
33. Основная доля возбудителей внутрибольничных инфекций приходится на
а) патогенные бактерии
б) условно-патогенные микробы
г) непатогенные микробы
Выберите один правильный ответ:
34.Дезинфектанты, обладающие моющими свойствами и низкой токсичностью, чаще относятся к группе
Выберите один правильный ответ:
35. Одноразовые пакеты для сбора отходов ЛПО, относящихся классу Б, должны иметь окраску
Выберите один правильный ответ:
36. Оптимальная рабочая температура большинства растворов при дезинфекции
Выберите один правильный ответ:
37. Срок сохранения стерильности одноразовых инструментов в двойных промышленных полиэтиленовых пакетах составляет
Выберите один правильный ответ:
38. Оценка качества стерилизации путем применения индикаторов – это контроль
Выберите один правильный ответ:
39. Для обработки волосистой части головы при обнаружении педикулеза можно использовать раствор
в) гидрокарбоната натрия
Выберите один правильный ответ:
40. Медицинские изделия после предстерилизационной очистки разрешено сушить
а) протиранием ветошью
б) на открытом воздухе в лотке
в) сухим горячим воздухом при 85 о С
Выберите один правильный ответ:
41. Мероприятия по профилактике ВБИ, направленные на повышение невосприимчивости пациентов и персонала
в) выявление и изоляция инфекционных больных и носителей
г) использование спецодежды, масок, перчаток
Выберите один правильный ответ:
42. Инфекционная безопасность – это
б) соблюдение правил асептики и антисептики
в) отсутствие патогенных микробов на различных поверхностях
г) отсутствие патогенных и условно-патогенных микробов на эпидемиологически значимых объектах больничной среды
Выберите один правильный ответ:
43.Свойство дезинфицирующего средства, обеспечивающее уничтожение бактерий
Выберите один правильный ответ:
44.Для приготовления 1 л моющего раствора для ручной предстерилизационной очистки инструментов необходимо взять средство «Биолот» в количестве
Выберите один правильный ответ:
45.Для стерилизации резиновых и некоторых полимерных изделий в ЦСО используют стерилизатор
Выберите один правильный ответ:
46. При дезинфекции погибают
а) только вегетативные формы микробов
б) только споровые формы микробов
в) вегетативные и споровые формы микробов
Выберите один правильный ответ:
47. При механическом методе дезинфекции используют
б) мытье, проветривание
в) орошение дезсредствами
г) пар под давлением
Выберите один правильный ответ:
48. ВБИ могут быть вызваны
а) любыми микроорганизмами
в) только бактериями
г) только патогенными возбудителями
Выберите один правильный ответ:
49.Дезинфектанты, обладающие способностью фиксировать биологические загрязнения, чаще относятся к группе
Выберите один правильный ответ:
50.Одноразовые пакеты для сбора отходов ЛПО, относящихся к классу А, должны иметь окраску
а) любую (кроме желтой и красной)
Выберите один правильный ответ:
51.Комбинированная дезинфекция – это сочетание методов
а) физический + механический
б) физический + химический
в) механический + химический
Выберите один правильный ответ:
52. В пакеты любого цвета (кроме желтого и красного) собирают отходы класса
Выберите один правильный ответ:
53. Оценка качества стерилизации путем обнаружения микроорганизмов на объектах – это контроль
Выберите один правильный ответ:
54. При попадании крови на кожные покровы, их необходимо обработать
а) раствором перманганата калия
б) 5% спиртовым раствором йода
Выберите один правильный ответ:
55.При проведении генеральных уборок смыв дезинфектанта с поверхностей проводится
а) стерильной ветошью водопроводной водой
б) чистой ветошью водопроводной водой
в) чистой ветошью дистиллированной водой
г) чистой ветошью кипячённой водой
Выберите один правильный ответ:
56.Текущая уборка в стационарах проводится (в соответствии с Сан.П и Н 2.1.3.2630-10)
Выберите один правильный ответ:
57.Химические индикаторы используют для контроля
а) режимов дезинфекции
б) режимов стерилизации
в) предстерилизационной очистки
г) стерильности изделия
Выберите два правильных ответа:
58.Воздушную стерилизацию можно проводить
а) в стерилизационной коробке с фильтром
б) в бязевой упаковке
в) в бумажной упаковке
Выберите один правильный ответ:
59.Мероприятия по удалению патогенных микроорганизмов и их переносчиков в присутствии источника инфекционного заболевания – это дезинфекция
б) очаговая текущая
г) очаговая заключительная
Выберите один правильный ответ:
60.Основной путь передачи ВИЧ-инфекции в ЛПО
Выберите один правильный ответ:
61. При проведении дезинфекционных мероприятий погибают
г) вегетативные и споровые формы микроорганизмов
Выберите один правильный ответ:
62. Физический метод дезинфекции – это
а) стирка, мытье, проветривание
б) протирание дезсредствами
в) воздействие высокой температурой, паром, излучением
г) использование антибиотиков
Выберите один правильный ответ:
Приобретенная устойчивость возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций к дезинфицирующим и антисептическим средствам
Пермская государственная медицинская академия им. академика Е.А. Вагнера Минздрава России; МСЧ № 15 Управления федеральной службы безопасности России по Пермскому краю; Пермский краевой госпиталь для ветеранов войн; Пермская краевая клиническая больница; Городская клиническая больница № 7, Пермь
Цель исследования. Изучение чувствительности разных видов возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций (ГСИ) к разным группам дезинфектантов и кожных антисептиков.
Материалы и методы. На тест-поверхностях (стекло, металл, пластик, дерево, клеенка) и в растворе изучена чувствительность к 18 дезинфицирующим средствам 238 штаммов возбудителей ГСИ 13 видов, изолированных от пациентов и из больничной среды двух акушерских, трех реанимационных и одного терапевтического стационара.
Результаты. Определена чувствительность К. pneumoniaе и S. haemolyticus, выделенных в акушерском стационаре, по отношению к 13 кожным антисептикам в эксперименте при гигиенической обработке рук, искусственно контаминированных изучаемыми микроорганизмами. На тест-поверхностях количество штаммов возбудителей внутрибольничных ГСИ, устойчивых к дезинфектантам, составило 1,3 ± 0,7%, не полностью чувствительных – 14,7 ± 2,3%. В растворе доля устойчивых штаммов оказалась равной 2,6 ± 1,8%, штаммов с неполной чувствительностью – 2,6 ± 1,8%. Суммированный показатель устойчивости и неполной чувствительности возбудителей внутрибольничных ГСИ к дезинфектантам на тест-поверхностях и в растворе составил 13,7 ± 1,9 на 100 штаммов.
Заключение. Чаще всего приобретенная устойчивость и неполная чувствительность формируется у P. аeruginosa, K. рneumoniaе, S. epidermidis и S. haemolyticus к препаратам, содержащим четвертично-аммониевые соединения, в тех отделениях лечебно-профилактических организаций, где регистрируются случаи ГСИ. Устойчивость возбудителей ГСИ чаще вырабатывается к кожным антисептикам на водной основе и к спиртосодержащим препаратам с низким (менее 58%) содержанием этилового или изопропилового спирта.
В настоящее время следует считать доказанной возможность формирования устойчивости возбудителей внутрибольничных гнойно-септических инфекций (ГСИ) ко всем группам дезинфицирующих средств (ДС) [1, 2]. В связи с этим в СанПин 2.1.3.2630-10 [3] введено положение о необходимости проведения в лечебно-профилактических организациях (ЛПО) мониторинга устойчивости циркулирующих микроорганизмов к применяемым ДС с последующей их ротацией при необходимости. Вместе с тем до настоящего времени на федеральном уровне методика определения чувствительности микроорганизмов к ДС в России остается не утвержденной. Применение же отдельными лабораториями произвольных методик оценки чувствительности микроорганизмов к ДС не позволяет корректно сопоставлять соответствующие результаты, полученные на разных территориях и в разных ЛПО. Не случайно показатель устойчивости возбудителей ГСИ к ДС, по данным научной литературы, варьирует чрезвычайно широко – о т 0 до 77 %.
Предполагается, что среди возбудителей ГСИ резистентность к ДС чаще вырабатывает синегнойная палочка [4, 5]. Отмечается, что устойчивость условно-патогенных микроорганизмов (УПМ) чаще формируется по отношению к ДС на основе четвертично-аммониевых соединений (ЧАС) [1, 2]. Вместе с тем сравнительные данные оценки резистентности разных видов УПМ к разным группам ДС, как правило, не учитывают эпидемическую ситуацию, на фоне которой были отобраны бактерии.
Приобретенная устойчивость возбудителей ГСИ может формироваться и по отношению к антисептикам (АС). Однако такие сообщения пока единичны [6, 7].
Цель работы – изучение чувствительности разных видов возбудителей внутрибольничных ГСИ к разным группам дезинфектантов и кожных антисептиков.
Материалы и методы
На тест-поверхностях (стекло, металл, пластик, дерево, клеенка), в соответствии с методическими рекомендациями [8, 9], изучена чувствительность к 18 ДС 238 штаммов возбудителей ГСИ 13 видов (Кlebsiella pneumoniaе, Рseudomonasaeruginosa, Escherichiacoli, Еnterobactercloacae, Citrobacterkoseri, Acinetobacterbaumanii, Staphylococcusaureus, S . warneri,, S. еpidermidis, S . cohnii, S. haemolyticus, Stenotrophomonasmaltophilia, Burkholderia cepacia), изолированных от пациентов и из больничной среды двух акушерских, трех реанимационных и одного терапевтического стационара. Использованы ДС на основе ЧАС (ЗД-септ, сепотосан-Т); ЧАС и амина (Амиксан), ЧАС и альдегида (Клиндезин-специаль, МИРОДЕЗ универ, Абсолюцид форте); ЧАС и гуанидина (МИРОДЕЗ пур); ЧАС, амина и гуанидина (Амиксидин, Фрисепт-Гамма); альдегида (КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N), амина и гуанидина (Дезофран); хлорсодержащие ДС, содержащие дихлорантин или натриевую соль дихлоризоциануровой кислоты (Форэкс-Хлор комплит, Сульфохлорантин-Д, УльтраХлорантин, Хлормисепт-эконом); кислородсодержащие (БэбиДез Ультра, ЭКОБРИЗ окси, препарат Х). Кроме того, в растворе к 12 ДС ( сепотосан-Т, Амиксан, МИРОДЕЗ универ, Абсолюцид форте, Амиксидин, Фрисепт-Гамма, КОМБИ-ИНСТРУМЕНТ-N, Форэкс-Хлор комплит, Сульфохлорантин-Д, УльтраХлорантин, БэбиДез Ультра, ЭКОБРИЗ окси) изучена устойчивость 76 штаммов УПМ 7 видов (К. pneumoniaе, Р. aeruginosa, A. baumanii, S. aureus, S. еpidermidis, S. cohnii, S. haemolyticus). Для оценки качества ДС оценивали эффективность их действия в отношении музейных тест-культур (E. coli № 1257 и S. aureus № 906). Использовали предусмотренные инструкциями антибактериальные концентрации ДС (0,01–1%) и экспозиции обработки (15–60 мин). Для нейтрализации ДС применяли 3% твин-80 с 0,3% лецитином. Опыты ставили в трех повторах при условии получения однотипных результатов, при разнотипных результатах исследования повторяли до 8 раз. Общее количество исследований с учетом повторов составило более 5 000.
Штамм микроорганизмов считали чувствительным к ДС при отсутствии роста микр.
Приобретение устойчивости к дезинфектантам характерно для каких возбудителей
Несмотря на немалое количество сообщений об изучении активности антимикробных средств, часто нелегко получить достоверные данные об устойчивости бактерий к дезинфектантам (ДС). Это связано с ограниченным числом тестируемых штаммов, а также применением разнообразных методик диагностики резистентности к биоцидам в разных странах. Взаимосвязь между устойчивостью invitro и неэффективностью ДС также остается спорным вопросом. В то же время распространение устойчивых микроорганизмов к антимикробным средствам, несомненно, способно повышать уровни летальности, заболеваемости и экономические затраты в медицинских учреждениях. В последнее время официальные документы всё чаще призывают по возможности сокращать использование биоцидов, улучшать политику их применения, оптимизировать инфекционный контроль и разрабатывать инновационные ДС. Доказательства о том, что улучшенные процедуры применения антимикробных средств могут снижать показатели резистентности, имеются не в полном объеме. Цель исследования: критическая оценка и обобщение данных о распространенности устойчивости бактерий к действующим веществам антисептиков и ДС путем проведения систематического обзора публикаций, содержащих результаты оригинальных исследований. Указанные микроорганизмы выбраны как ведущие возбудители инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП). Кроме того, в силу известных микробиологических особенностей логично ожидать различия в степени резистентности к определенным ДС [1,2].
Методология поиска. В период 2013–2015 года осуществлялся поиск информации по ключевым словам в электронных базах данных PubMed, e—library.ru, TRIP, без ограничений по языку и дате публикации. Критерии отбора: эпидемиологические исследования (клинические испытания, когортные, перекрестные исследования, исследования до-после и др). Основной критерий: наличие и распространенность генов резистентности (напр., генов smr, qac A,B,C,G,H для четвертичных аммониевых соединений) (ЧАС).
Кроме того, мы обращали внимание на источники, содержащие информацию следующего типа: сравнение минимальных ингибирующих концентраций (МИК) изучаемых культур с таковыми для тест-штаммов микроорганизмов; количественная оценка устойчивости штаммов к ДС среди изучаемых культур. В отношении нескольких публикаций для выяснения деталей эксперимента мы вели переписку с авторами этих работ.
Были определены следующие критерии исключения: повторные публикации, содержащие сходные данные; публикации исследований, представляющие информацию только о резистентности указанных микроорганизмов к антибиотикам; документы, в которых приводилась только оценка методов определения чувствительности к ДС на основе тест-штаммов микроорганизмов. Критериями качества исследований, включенных в настоящий систематический обзор, являются четкое описание методики определения чувствительности бактерий к ДС, а также наличие в тексте цифровых данных, а именно – точное указание на объем выборки, количество чувствительных и устойчивых культур и т.п. Под устойчивостью (естественной и приобретенной) бактерий понимали свойство микробов противостоять повреждающему действию механических, физических и химических факторов [2]. При выполнении поиска использовались следующие термины (одиночные и в сочетании с другими терминами): bacterial resistance, susceptibility, biocide, disinfectant, resistancegene, minimal inhibitory concentration, antiseptic, staphylococcusaureus, pseudomonasaeruginosa, еnterococcus, klebsiella, enterobacter, acinetobacter, chlorhexidine, triclosan, quaternary ammonium compound, benzalkonium. В отобранных публикациях объектами исследования выступали культуры микроорганизмов, полученные от пациентов и из внешней среды. Просмотр результатов исследований и извлечение данных проводились независимо двумя авторами. Структура поисковых запросов информации была выстроена по следующему принципу, например:
— в базах данных PubMed: ((resistance[ti] AND («disinfectants» [Pharmacological Action] OR «disinfectants»[MeSH Terms] OR «disinfectants»[All Fields] OR «biocide»[All Fields])) AND («staphylococcus aureus»[MeSH Terms] OR («staphylococcus»[All Fields] AND «aureus»[All Fields]) OR «staphylococcus aureus» [All Fields])) AND «staphylococcus aureus» [MeSH Terms].
Результаты и обсуждение. Установлено, что использованные нами электронные ресурсы содержали достаточно ограниченное число описаний оригинальных исследований, посвященных изучаемой проблематике. Несколько публикаций не соответствовали критериям включения. Также ряд ссылок и URL-адресов на момент проведения данного исследования не функционировали, хотя и были проиндексированы в выбранных нами биомедицинских базах данных.
Хронологические рамки публикаций, вошедших в исследование, по изучению устойчивости Klebsiellaspp – 1980–2013 гг., P. aeruginosa – 1972–2011 гг., Acinetobacterspp – 1987–2014 гг., S. aureus – 1960–2013 гг., Enterococcusspp – 1990–2014 гг. В данный систематический обзор вошло всего 111 работ, удовлетворявших условиям поиска (распределение публикаций по видам микроорганизмов показано на схеме). В PubMed было найдено более 60 % вошедших в настоящую работу исследований. Анализ опубликованных работ показал, что подходы исследователей к оценке устойчивости микроорганизмов к ДС и стиль представления данных постоянно менялись: количественная оценка резистентных штаммов (абсолютные числа и доля от общего числа культур), определение МИК и минимальных бактерицидных концентраций. Ключевым моментом стало выявление и оценка распространенности генов устойчивости к ДС. Более того, часто авторы при оценке устойчивости ориентировались на взаимодействие биоцида с бактериальными составляющими биопленок. В ряде публикаций вывод об отсутствии устойчивости микроорганизмов к ДС был сделан по факту выявляемого снижения контаминации объектов внешней среды, а также уменьшения степени колонизации пациентов.
Проведенный систематический обзор публикаций позволил извлечь из них данные по большому количеству торговых марок ДС или в ряде случаев – в отношении активно действующих веществ. В то же время данные по чувствительности/устойчивости бактерий к ним достаточно противоречивы. Спектр протестированных субстанций включал в себя ЧАС, спирты, бигуаниды, тяжелые металлы, хлор- и кислородсодержащие ДС. Например, больше всего исследований было посвящено вопросам изучения устойчивости микроорганизмов к хлоргексидинабиглюконату, ЧАС и бензалкония хлориду: 39, 22 и 19 работ соответственно. Триклозан был объектом изучения в меньшем числе исследований (6 публикаций). Указанные ДС, как известно, активно применяются в медицинских организациях различного типа, входят в рецептуры многих торговых марок, оттого интерес к ним вполне закономерен.
Данные нашего систематического обзора позволяют говорить о различиях в методологических подходах к изучению чувствительности всех выбранных нами микроорганизмов к различным биоцидам. Нами сделан акцент на систематизации и критической оценке сведений о распространении генов резистентности к ЧАС: qacA,B,C,Z,E,ED1 и smr. Отметим, что особенности распространения гена smr были описаны только в шести работах. Несмотря на небольшое количество публикаций по этому вопросу (всего 17), в настоящее время исследование устойчивости к ДС на молекулярном уровне становятся крайне важными, наряду с традиционно осуществляемой в разных странах большой работой относительно антибиотиков.
S. aureus традиционно рассматривается как неотъемлемый компонент молекулярно-генетических исследований, проводимых в рамках эпидемиологического надзора за стафилококковой инфекцией. Характер распространенности генов qac в популяции стафилококков был изучен в 8, а гена smr – в 5 работах. В подавляющем количестве публикаций как объекты исследования авторами рассматривались MRSA, что объясняется их значимостью в возникновении ИСМП. Обращает на себя внимание разброс полученных в них показателей. Так, по данным разных авторов, гены qacA/B суммарно выявлялись в 0,7–94,6 % исследованных культур S.aureus. В отношении только MRSA от 2,1 до 94,6 % подобных вариантов стафилококка являлись носителями указанных генов. Обобщая информацию о представленности разных генов устойчивости к ЧАС из группы qac, у нас появляются основания говорить о гетерогенности показателей: от полного отсутствия (показательный пример с qacG) до наличия на высоком уровне. Распространенность гена smr находилась на достаточном уровне, при этом он идентифицирован в 3,6–44,2 % стафилококков. Ожидаемым результатом стала также широкая распространенность qacA, хотя показатели существенно варьировали (от 0,6 до 33,7 %). В то же время, более низкой она была для qacС (5,3–10,8 %), qacН (3,3–7,1 %), а также для гена qacВ (1,5 %).
Несмотря на доказанное этиологическое значение энтерококков во внебольничной и госпитальной патологии человека, обращает внимание сравнительно небольшое число опубликованных работ по проблеме, обозначенной в нашем систематическом обзоре. Кроме того, важно отметить наличие у авторов в разных странах отличающихся подходов к оценке устойчивости этого микроорганизма к ДС и антисептикам. Установлено, что в двух работах целью исследования послужило изучение распространенности генов резистентности к биоцидам. Как и в случае со стафилококками, нами фиксировалась неоднородность представленных показателей. В частности, гены qacA/B обнаружены лишь в 0,4 % (2/473 протестированных E. faecalis). Ген smr также был обнаружен у единичных культур исследованных штаммов E. faecalis (у 2 штаммов; 0,2 %), которые проявляли устойчивость к дидецилдиметиламмония хлориду. Авторы отмечали, что гены выявлялись как у клинических штаммов (из образцов фекалий, гемокультуры), так и внешней среды (крупный рогатый скот, сыр). В штаммах, изолированных из мяса и мясных продуктов, указанных структур не было найдено [4]. Для сравнения, среди энтерококков ген qacZ был обнаружен в существенно большем количестве случаев – 52 % (n=73). При этом авторами отмечалось наличие у микроорганизма резистентности к бензалкония хлориду. Надо сказать, что данная публикация является одной из немногих, посвященных вопросам изучения данного малоизвестного гена устойчивости. Рассматриваемая работа, по сути, является первым сообщением об изучении механизмов устойчивости Enterococcusspp к биоцидам [5]. Безусловно, эпидемиология подобных генов среди популяции энтерококков (в том числе VRE) требует дальнейшего изучения. Информация о других генах резистентности к ДС, в отношении которых нами производился информационный поиск, не содержалась в обнаруженных публикациях. Отметим, что в одном из найденных источников шла речь о важности изучения распространения гена ace у данных бактерий [7].
Среди возбудителей ИСМП из семейства Enterobacteriaceae особый интерес у ученых вызывают штаммы Klebsiellaspp, являющиеся продуцентами β-лактамаз расширенного спектра действия (БЛРС). В ходе выборочных исследований при изучении резистентности клинических штаммов K. pneumoniae к бензалконию ген qacDE1 обнаруживался в диапазоне от 53,1 до 68,0 % [9]. В одном исследовании давалась оценка распространенности другого важного гена – qacE, который идентифицирован в 1,6 % случаев (1/64). Авторами высказано предположение, что данный механизм способствовал формированию устойчивости бактерии к двум компонентам биоцида торговой марки Trigene, относящимся к ЧАС (бензалконий, додециламин-сульфат). При проведении систематического обзора были получены публикации, посвященные обнаружению среди клебсиелл гена cepA, распространенность которого находилась на высоком уровне, составив 87,5 % [3].
Количество публикаций по изучению устойчивости Enterobacterspp, удовлетворявшихся критериям включения, было намного меньше по сравнению с другими рассматриваемыми микроорганизмами. В работах, посвященных распространению генов устойчивости к ДС, главным образом поднимались вопросы наличия у бактерий гена qacDE1. По обобщенным данным, он обнаруживался у клиническим штаммов Enterobacterspp в достаточном количестве, с колебаниями от 55 до 100 % случаев.
Неферментирующие грамотрицательные бактерии (НГОБ) неизменно являются объектами изучения чувствительности к антибиотикам. В то же время в настоящий момент крайне мало количество публикаций по оценке вклада различных механизмов в формирование устойчивости к ДС и антисептикам. На момент проведения нашего обзора из баз данных была извлечена одна публикация с описанием результатов подобного исследования на малой выборке. В нем у нескольких клинических штаммов Acinetobacterspp, изолированных в ожоговых центрах, присутствовали гены qacE (2/5) и qacDE1 (практически у всех изученных штаммов – 4/5). Авторы отмечают меньшее количество ацинетобактеров-носителей подобных генов по сравнению с синегнойной палочкой, выделенной ими в тех же условиях [8]. Важно отметить, что в подавляющем количестве публикаций, касающихся устойчивости НГОБ к ДС, обычно приводится описание того или иного механизма резистентности без количественной оценки распространенности возможных генов устойчивости в конкретной популяции.
В настоящее время ЧАС находят широкое применение в здравоохранении и различных отраслях народного хозяйства (в частности, пищевой промышленности). Полярность таких биоцидов обусловлена наличием у них поверхностно-активных свойств, отсутствие коррозирующего действия на обрабатываемые предметы, а также относительно низкой токсичностью. В то же время практика использования ДС на основе ЧАС требует проведения эпидемиологического и микробиологического мониторинга ввиду доказанного риска быстрого формирования к ним устойчивости у бактерий. Понимание молекулярных механизмов формирования устойчивости к ним существенно изменилось. Было установлено, что подобная резистентность ассоциирована с присутствием генов qacA и qacB, а также smr. Они кодируют синтез трансмембранных эффлюксных белков, которые обусловливают устойчивость микроорганизмов к липофильным катионным веществам, в т.ч. ЧАС, а также красителям (напр., этидия бромиду). Важной находкой было обнаружение у гена qacA способности влиять на появление устойчивости и к хлоргексидину. Гены qac можно обнаружить, как показано в ряде исследований, на крупных плазмидах.
Продуктом экспрессии гена smr являются т.н. «малые белки множественной лекарственной устойчивости», откуда и произошел этот акроним. Семейство генов smr включает в себя qacC,D,G,E,H, что говорит о более широком арсенале механизмов резистентности к дезинфектантам, чем это считалось ранее. Подобные структуры находятся на мелких и крупных конъюгативных пламидах [6]. Особое место занимают исследования по выявлению гена qacZ у грамположительных кокков. На модели E.faecalis было продемонстрировано, что данный ген кодирует синтез т.н. малого транспортера множественной лекарственной устойчивости (получившего название EFA0010) в положении генома V583. Выявлено участие этой генетической структуры не только в понижении чувствительности к ЧАС, но и по отношению к этидия бромиду [5].
Механизмы устойчивости грамнегативных бактерий к дезинфектантам, как правило, определяются генами, ассоциированными с резистентностью к ЧАС, а именно наличие у таких микроорганизмов генов qacE и qacDE. При этом представляется важным их мониторинг не только у штаммов с явными признаками резистентности к антибиотиками (к примеру, продукция БЛРС), но у вариантов бактерий с другими маркерами внутрибольничного эковара.
Методические особенности в представлении разными авторами результатов исследования устойчивости некоторых микроорганизмов к биоцидам, в частности, НГОБ обусловливают необходимость расширения информационного поиска, оптимизации параметров систематического обзора публикаций и проведения динамической оценки.
Заключение
Для объективной оценки устойчивости микроорганизмов к антимикробным препаратам необходимо осуществлять систематические обзоры не только по антибиотикорезистентности, но и устойчивости к ДС. В методическом отношении важно учитывать наличие на данный момент ограниченного числа исследований, результаты которых отличаются существенной гетерогенностью. Подобные обзоры, организованные с учетом принципов доказательной медицины, должны быть, безусловно, доступны специалистам на русском языке. Ряд вопросов, касающихся проблемы резистентности актуальных возбудителей ИСМП к ДС, применяемым в практическом здравоохранении, остаются изученными не в полной мере. Это является основанием для проведения молекулярно-генетического мониторинга устойчивости к ДС, внедрение унифицированной методики изучения чувствительности микроорганизмов к биоцидам.