Функциональные маркеры
CD4+CD45RA+/CD4+CD45RO+ Определение относительного количества “наивных” CD4+-лимфоцитов, «клеток памяти», а так же их соотношения рекомендуется выполнять при острых и хронических инфекционных заболеваниях.
CD45 – общий лейкоцитарный антиген представлен на поверхности всех лейкоцитов человека. Уровень экспрессии CD45 нарастает по мере дифференцировки гемопоэтических клеток от незрелых предшественников до зрелых форм. Максимальный уровень CD45 представлен на зрелых лимфоцитах. Существует несколько изоформ CD45. Антиген CD45RA экспрессируется на наивных Т-клетках, В-клетках и моноцитах.
CD45RO – экспрессируется на эффекторных Т-клетках, Т-клетках памяти, В-клетках, моноцитах и макрофагах.
Увеличение Т-лимфоцитов хелперов с фенотипом CD4+CD45RO+ (“клетки памяти”) характеризует активный гуморальный ответ на чужеродный антиген в прошлом и потенциальную возможность развития острых воспалительных при повторном контакте с чужеродным антигеном за счет сформированной иммунологической памяти.
Индекс снижается после перенесенного инфекционного заболевания и увеличение его в периоде реконвалесценции говорит о благоприятном течении заболевания. С возрастом индекс снижается за счет увеличения клеток памяти. Показано, что процент “наивных” CD4-лимфоцитов до начала терапии влияет на последующий прирост CD4-лимфоцитов у больных ВИЧ-инфекцией. При развитии инфекции, при хирургическом вмешательстве происходит накопление CD4 +CD45RO+ и снижение CD4+CD45RA+.
Функциональные маркеры CD4+/CD4OL+, CD4+/CD28+, CD8+/CD28+, CD8+/CD57+CD4+/CD4OL+ – тест рекомендуется назначать при нарушении гуморального ответа, для диагностики врожденных иммунодефицитов.
CD4OL – ко-стимулятор пролиферации Т-клеток, экспрессируется активированными Т-клетками. Играет центральную роль на различных фазах В-клеточного ответа на Т- зависимые антигены.
Следствием дефицита CD4OL является ослабление активности дендритных клеток, а именно выработки ими ИН12 и интерферона гамма, необходимых для дифференцировки Т-хелперов 1 и реализации воспалительного варианта клеточного иммунного ответа. Снижение относительного количества этих клеток наблюдается при врожденных иммунодефицитах (гипер–IgM-синдроме, который проявляется в ослаблении гуморального иммунитета – функциональная “слабость” IgM- антител), а также клеточного иммунитета. Численность Т- и В-лимфоцитов при этом не изменяется.
Повышение экспрессии CD4OL на Т-хелперах отмечено при хроническом лимфолейкозе и аутоиммунных заболеваниях.
CD4+/CD28+ – отражает относительное содержание Т-хелперов со сниженной функцией клеточной адгезии. Рекомендовано назначать при инфекционных заболеваниях различной этиологии. CD28 экспрессируется на большинстве Т-лимфоцитов (CD4+-клетки до 95%), активированных В-клетках, плазматических клетках. Принимает участи в активации Т-лимфоцитов, является индуктором пролиферации и продукции цитокинов. Котимулирующая молекула, играющая важную роль в иммунном ответе.
Снижение экспрессии CD28 на CD4-лимфоцитах отмечено при вирусных и бактериальных инфекциях различной этиологии, у пожилых.
CD8+/CD28+ – отражает относительное содержание ЦТЛ со сниженной функцией клеточной адгезии. Рекомендовано назначать при инфекционных заболеваниях различной этиологии. CD28 экспрессируется на большинстве Т-лимфоцитов (CD8+-клетки до 50%), активированных В-клетках, плазматических клетках. Принимает участие в активации Т-лимфоцитов, является индуктором пролиферации и продукции цитокинов. Ко-стимулирующая молекула, играющая важную роль в иммунном ответе. Снижение экспрессии CD28 на ЦТ лимфоцитах отмечено при вирусных и бактериальных инфекциях различной этиологии, у пожилых.
CD8+/CD57+ – дополнительный маркер нарушений функционирования иммунной системы при хронических заболеваниях. CD57 экспрессируется на NK-клетках, некоторых Т-лимфоцитах, В-лимфоцитах, моноцитах. Показано, что увеличение экспрессии на ЦТ лимфоцитах замедляет пролиферацию Т-клеток. Увеличение Т-лимфоцитов с фенотипом CD8+CD57+ отмечено при некоторых хронических инфекциях, в частности, при туберкулезе и ВИЧ-инфекции, синдроме Фелти, ТNK- клеточном лейкозе. При благоприятном течении заболевания, в процессе терапии, количество этих клеток нормализуется.
Тест используют при дифференциации нейроэндокринных опухолей. Снижение – при NK-клеточных лимфомах, болезни Лайма.
CD19+/CD5+популяция В-лимфоцитов (В1клетки). Тест рекомендован как дополнительный диагностический маркер при аутоиммунных заболеваниях и мониторинге лечения аутоиммунных заболеваний.
В настоящее время среди В-лимфоцитов выделяют три субпопуляции: В1, В2 и В-клетки памяти. При аутоиммунных заболеваниях В-лимфоциты начинают экспрессировать рецептор СD5. Их называют В1-клетки. В норме этот рецептор экспрессируется на Т-лимфоцитах, В-лимфоцитах до 1,3%, клетками лимфоидной ткани селезенки, вилочковой железы, принимает участие в регуляции пролиферации Т-лимфоцитов. Было выявлено, что В1-популяция увеличивается у пациентов, страдающих аутоиммунным тиреоидитом, СД 1 типа, СКВ, ревматоидным артритом, миастенией, в процессе лечения число этой популяции снижалось до нормальных величин. При пролиферации клонов этих клеток и преобразовании их в плазматические клетки происходит избыточная наработка аутоантител.
ОЦЕНКА ЭКСПРЕССИИ CD45 ПРИ АНАЛИЗЕ ПОПУЛЯЦИИ БЛАСТНЫХ КЛЕТОК У ДЕТЕЙ С ОСТРЫМИ ЛЕЙКОЗАМИ
Представлены результаты исследования распределения экспрессии антигена CD45 на лимфоцитах гематологически здоровых доноров (n = 19) и больных острыми лейкозами на этапе диагностики (n = 74). Зрелые лимфоциты отличались от бластов более выраженной экспрессией CD45. Гейтирование по CD45 позволяет точно идентифицировать лимфоциты при всех вариантах ОМЛ и ОЛЛ и является удобным средством идентификации патологических клеток.
Лабораторная диагностика острых лейкозов (ОЛ) начинается с выявления в периферической крови и костном мозгу бластных клеток, которые идентифицируются методом световой микроскопии. Иммунодиагностика, как следующий этап диагностики, основана на сопоставлении морфофункциональных и иммунофенотипических характеристик лейкозных бластов и нормальных/нетрансформированных клеток гемопоэза. Первым шагом иммунофенотипирования является выделение пула злокачественных клеток из общей популяции. Для этого необходимо отделить собственно бластные клетки от детрита, слипшихся клеток, которые могут в разном количестве присутствовать в анализируемом образце, а также от некоторого количества нормальных клеток, которые могут сохраняться в пробе. Надо также помнить о возможном разведении образца периферической кровью. Все эти факторы могут серьезно повлиять на конечный результат исследования. Недостаточно четкое гейтирование (выделение бластной популяции) может привести к неверным выводам при анализе иммунофенотипа.
Нашей задачей было проанализировать разли-
чия в экспрессии общелейкоцитарного антигена CD45 на поверхностных мембранах нормальных лимфоцитов и бластов для иммуноцитофлюориметрического разграничения зрелых лимфоцитов и лейкемических клеток при диагностике острых лейкозов.
ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
В настоящее исследование включены пациенты (n = 74) с ОЛ, находившиеся на лечении в Отделении онкогематологии для детей Института неотложной и восстановительной хирургии им. В.К. Гусака АМН Украины в период 2005–2007 гг. Среди обследованных было 25 девочек (33,8%) и 49 мальчиков (66,2%). Средний возраст пациентов — 7,1 года. Самому младшему ребенку было 3 мес, самому старшему больному — 18 лет. У всех пациентов было проведено иммунофенотипирование методом проточной
цитометрии. Для анализа светорассеяния нормальных лимфоцитов использовали венозную кровь гематологически здоровых доноров (n = 19).
Материалом для проточноцитометрического исследования у больных с ОЛ являлись костный мозг и периферическая кровь. Вид подготовки пробы по протоколу: окрашивание — лизис — отмывка. Процедура настройки прибора и контроль качества его работы осуществлялся сервисной службой украинского представителя Becton Dickinson (BD) фирмой Bioline-Ukraine. Анализ проводили с помощью программного обеспечения FACSComp (BD), программа CellQUEST. При учете результатов регистрировали как процент клеток, экспрессирующих маркер, так и среднюю интенсивность флюоресценции (СИФ), которую выражали в условных единицах (усл. ед.), соответствующих среднему каналу максимального свечения маркера. Позитивность определяли по отношению к негативному изотипическому контролю. Статистическую обработку полученных данных проводили с помощью стандартной прикладной программы Microsoft Ex- cel 2003, рассчитывая средние значения показателей, ошибку средней и достоверность различий по t-критерию Стьюдента. Коэффициент корреляции r рассчитывали по Пирсону.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Объектом исследования при диагностике ОЛ являлась популяция лейкемических клеток, которую было необходимо выявить в общей массе клеток и охарактеризовать. Анализ клеточной популяции методом проточной цитометрии основан на измерении отдельных клеток (или какой-либо «биологической частицы», включая изолированное ядро, хромосомные препараты или микробиологические организмы) в жидком потоке, во время их прохождения через монохроматический свет, продуцируемый лазером. Физические свойства, такие как размер и диаметр ядра, наличие цитоплазматических гранул, могут быть измерены у отдельной неокрашенной клетки. На основании указанной ин-
формации мы можем разделить все лейкоциты на 3 основные популяции: лимфоциты, гранулоциты и моноциты. Анализ клеток при ОЛ в целом соответствует тому, что используется при лимфопролиферативных заболеваниях. Для этого выделяют определенную популяцию клеток и осуществляют более прицельный анализ с помощью логического ограничения (гейтирования) по физическим характеристикам клеток и/или на основании экспрессии определенного маркера.
На двухмерных гистограммах (FSC/SSC), где ось x отражает размеры клеток, а ось y — гранулярность, положение нормальных клеток определяется в зависимости от их физических параметров (рис. 1).
Рис. 1. Расположение кластеров нормальных клеток
Из представленных данных видно, что лимфоциты, как клетки довольно небольшого размера, с невысокой степенью гранулярности, имеют низкие значения как по оси x, так и по оси y. Моноцитарный гейт касается лимфоцитарного гейта с превышением значения SSC в 1,5 раза. Гранулоцитарный гейт касается моноцитарного гейта и распространяется вверх по всей оси SSC.
Анализ клеток при ОЛ также начинается с выделения популяции бластных клеток. В большинстве случаев он ведется в полигоне, по светорассеянию, соответствующему лимфоцитам. Если количество бластных клеток велико (70–90%), анализируется весь регион. Если популяция малоклеточная (до 50%) и присутствуют в большом количестве оставшиеся нормальные лимфоциты, то по параметрам светорассеяния невозможно разграничить бластные клетки и нормальные лимфоциты периферической крови (ЛПК). Как видно на рис. 2, популяция бластов вследствие большой гетерогенности клеток, входящих в ее состав, не может быть идентифицирована по параметрам FSC/SSC. Поэтому для более детальной характеристики клеточного полигона мы анализировали уровень экспрессии CD45 в сочетании с боковым светорассеянием (SSC/CD45). Оценка экспрессии данного антигена представляется важной потому, что общелейкоцитарный антиген CD45 (трансмембранный гликопротеин) присутствует на всех лейкоцитах вне зависимости от степени дифференцировки, однако уровень экспрессии может быть различным на нормальных и патологически измененных клетках.
В подавляющем большинстве проанализированных нами случаев ОЛ гистограмма SSC/CD45 (ось x отражает уровень экспрессии CD45, а ось y — гранулярность) позволяла более точно, по сравнению с возможностями гистограммы FSC/SSC, разделить низкогранулярные клетки на нормальные (нетрансформированные) лимфоциты и опухолевые (лейкемические) бласты, то есть выявить патологическую популяцию. На рис. 3 показано, что бластные клетки занимают по оси x (на гистограмме справа) место, которое пустует в образце здорового донора. То есть, бластные клетки, обладая одинаковой гранулярностью с нормальными лимфоцитами, имеют более низкий уровень экспрессии CD45.
Однако визуальная оценка интенсивности экспрессии CD45 не позволяет обеспечить абсолютную надежность гейтирования, так как можно отмечать случаи, когда часть или все лейкозные клет-
Рис. 2. Расположение бластной популяции при остром лейкозе
ки отрицательны по этому антигену или значения экспрессии CD45 приближаются к таковым на нор-
Мы проанализировали и такие характеристики антигена CD45, как плотность его распределения на мембране позитивных клеток по СИФ. Зна-
чение показателей интенсивности флюоресценции 
в настоящее время активно изучается с точки зре
ния возможности их потенциального использова-
ния для повышения точности диагностики лейкозов, для получения более глубокой информации о биологической сущности бластных клеток, что мо-
жет оказаться полезным для прогнозирования исхода заболевания. При учете результатов мы реги-
стрировали как процент клеток, экспрессирующих маркер CD45, так и СИФ. СИФ во всех пробах с отрицательным изотипическим контролем определялась в диапазоне от 2,9 до 4,5 усл. ед. как по оси FL1 (соответствующей МкАТ, меченным FITC), так и по оси FL2 (соответствующей МкАТ, меченным РЕ). Диапазон СИФ маркерa CD45 на бластных клетках колебался от 25 до 1400 усл. ед., что в 10–50 раз превышало интенсивность свечения изотипического контроля и исключало возможность ошибки.
Эффективность разделения лимфоцитов и бластов при ОЛЛ подтверждена на основании того, что на лимфоцитах отсутствовали маркеры клетокпредшественников (TdT, CD10 и CD34), которые были экспрессированы на бластах различных линий дифференцировки.
Таблица Сопоставление СИФ CD45 лимфоцитов и лейкемических бластов
«Наивные» CD4 лимфоциты/клетки памяти (CD45 PC5/CD4 FITC /CD45RA PE, CD45 PC5/CD4 FITC/CD45RO PE)
| Исследуемый биоматериал | Кровь венозная (с ЭДТА) |
| Метод исследования | проточная цитофлуориметрия |
| Cрок исполнения с момента поступления биоматериала в лабораторию | 7 |
Описание
Исследование субпопуляций лимфоцитов – это оценка иммунного статуса пациента. Подобные исследования обычно назначаются лицам, часто переносящим ОРВИ и другие «простудные» заболевания, а также больным хроническими инфекционными заболеваниями, такими как ВИЧ, герпес, гепатиты и др.
Количественное определение подмножеств лимфоцитов также полезно при оценке пациентов с первичными иммунодефицитами всех возрастов (включая скрининг новорожденных на тяжелый комбинированный иммунодефицит), при мониторинге после иммуносупрессивной терапии в целях трансплантации или любого другого соответствующего клинического состояния, при котором используется иммуномодулирующее лечение.
Что показывает анализ крови на субпопуляции лимфоцитов («наивные» лимфоциты и клетки памяти)?
Исследование относительного количества «наивных» CD4 лимфоцитов (CD4+CD45RA+), клеток памяти (CD4+CD45R0+) и их соотношения обычно назначают при острых и хронических инфекционных заболеваниях.
CD45 называют общим лейкоцитарным антигеном, учитывая его общую экспрессию в подавляющем большинстве клеток гематолимфоидного происхождения. Экспрессия CD45 очень специфична и довольно чувствительна для клеток гематолимфоидного происхождения, таким образом, отличая лимфому/лейкоз от других новообразований. Основным исключением является классическая лимфома Ходжкина, в которой экспрессия CD45 отсутствует. CD45RO экспрессируется на эффекторных Т-клетках, Т-клетках памяти, В-клетках, моноцитах и макрофагах.
«Наивные» Т-клетки непрерывно циркулируют через лимфатические узлы и при распознавании специфического антигена подвергаются активации. Из-за своего «антиген-неопытного» состояния «наивные» Т-клетки нуждаются в активации более мощными антиген-презентирующими клетками. Т-клетки могут быть подразделены на «наивные» и клетки памяти на основе экспрессии маркеров клеточной поверхности, таких как CD45RA и CD45RO.
Т-клетки памяти – это антиген-опытные клетки, которые присутствуют в большем количестве, чем антиген-специфические предшественники, и могут более эффективно и быстро реагировать на специфический антиген. Т-клетки памяти могут поддерживать свои популяции независимо от антигена путем гомеостатической пролиферации в ответ на цитокины. Т-клетки памяти особенно важны для поддержания иммунной компетентности, поскольку они связаны с быстрой и эффективной реакцией на патогены.
Показания к назначению анализа крови на субпопуляции лимфоцитов
Подготовка
Перед сдачей анализа крови на субпопуляции лимфоцитов рекомендуется голодание не менее 8 и не более 14 часов (можно пить воду без газа). За сутки до взятия биоматериала не рекомендуется курить и испытывать физические или эмоциональные перегрузки, исключить прием алкоголя.
Формат результата, единицы измерения
% содержания и абсолютное количество, %, 109/л
Интерпретация результата
Результаты данного исследования должны быть сопоставлены с данными других исследований на иммунный статус и с другой информацией о состоянии пациента, с учетом клинических симптомов и анамнеза.
Отсутствие или уменьшение количества наивных Т-клеток указывает на отсутствие или нарушение восстановления Т-клеток. Увеличение числа наивных Т-клеток с соответствующим уменьшением Т-клеток памяти указывает на неспособность к дальнейшей дифференцировке и эффекторной функции или избирательную потерю Т-клеток памяти и – как следствие – повышенный риск заражения.
Cd45 маркер что показывает
Исследование включает в себя определение абсолютных и относительных значений субпопуляционного состава Т-лимфоцитов (CD3, CD4, CD8, CD45), количества Т-регуляторных лимфоцитов ( T-reg. Cells) соотношения Т – хелперы/Т – цитотоксические клетки и Т-клеток, несущих на своей поверхности маркеры активации CD38, HLA-DR. Рекомендуется к назначению для контроля показателей клеточного звена иммунной системы в динамике после комплексного иммунологического обследования.
Иммунофенотипирование, клеточный иммунитет, многоцветный клеточный анализ методом проточной цитометрии, Т-клетки, Т-хелперы, Т-цитотоксические клетки, Т-регуляторных лимфоциты.
Human Immune System, Immunophenotyping, Multicolor Flow Cytometry Cell Analysis, Human Leukocyte Differentiation Antigens, Human T cells, T helper cells, Cytotoxic T cells, T-reg Cells, Activation markers.
Метод исследования
Какой биоматериал можно использовать для исследования?
Общая информация об исследовании
В основе проточной цитофлуориметрии лежит проведение фотометрических и флюоресцентных измерений отдельных клеток, пересекающих одна за другой вместе с потоком жидкости луч монохроматического света, обычно света лазера.
СD3
Этот маркер позволяет идентифицировать зрелые покоящиеся (интактные) Т-клетки и подсчитать общее количество Т-лимфоцитов. Количественная оценка субпопуляции CD3+ лимфоцитов имеет диагностическую значимость в следующих случаях:
— первичные и вторичные иммунодефициты;
— острые вирусные инфекции, включая ВИЧ;
— внутриклеточные бактериальные и паразитарные инфекционные заболевания (например, туберкулез, лепра, лейшманиоз);
— реакции отторжения трансплантатов и болезни «трансплантат против хозяина»;
— лимфопролиферативные расстройства (острый Т-лимфобластный лейкоз).
При сахарном диабете довольно часто наблюдается снижение у больных процентного содержания и абсолютного числа СD3+ лимфоцитов.
СD4
Определение количества CD4+ клеток имеет значение в диагностике состояний, связанных с дефектами антителопродукции и реакций клеточноопосредованного иммунитета. Показателю числа CD4+ клеток отводится решающая роль для прогноза течения ВИЧ-инфекции.
Функциональное состояние CD4+ лимфоцитов тестируют по цитокиновому профилю: функциональная полноценность Th1-клеток подтверждается по секреции g-IFN, а Th2-клеток – по секреции IL-4.
СD8
Дифференцировочная молекула CD8 представляет собой гликопротеин, обнаруживаемый на поверхности тимоцитов и Т-лимфоцитов и участвующий в распознавании антигенных пептидов в контексте с молекулами главного комплекса гистосовместимости (MHC) класса I.
Клиническая значимость определения количества СD8+ лимфоцитов:
До недавнего времени приписываемая субпопуляции CD8+ клеток супрессорная активность сейчас практически полностью отвергается. По данным большинства экспериментальных и клинических исследований считается, что существование какой-либо отдельной популяции Т-супрессорных клеток, даже без привязки к CD8-маркеру, маловероятно.
При аутоиммунных тиреоидитах, в частности при диффузном токсическом зобе (ДТЗ), в реакциях клеточного иммунитета отмечается снижение субпопуляции CD8+ лимфоцитов и снижение функциональной активности цитотоксических лимфоцитов.
При сахарном диабете также отмечается уменьшение функциональной активности и количества CD8+ лимфоцитов.
Снижение фракции СD8+ лимфоцитов наблюдается также у больных с первичной хронической недостаточностью коры надпочечников (болезнь Аддисона).
Анти-HLA—DR
Молекула HLA-DR также является маркером активации и принадлежит к МНС II класса. Она представляет собой трансмембранный гликопротеин, состоящий из a- и b-субъединиц, имеющих молекулярный вес 36 и 27 кД. Анти-HLA-DR реагирует только с эпитопом HLA-DR и не имеет перекрестных реакций с молекулами HLA-DQ и HLA-DP. Он экспрессируется на В-лимфоцитах, моноцитах, макрофагах, активированных Т-лимфоцитах.
Имеются данные о том, что молекула HLA-DR экспрессируется примерно на 10 % Т-лимфоцитах ПК, однако при активации клеток митогеном количество и плотность ее экспрессии резко возрастает. Существует предположение, что молекула HLA-DR на Т-клетках может выступать в качестве рецептора, участвующего в трансдукции сигнала активированными Т-лимфоцитами. Это наводит на мысль о ее возможной роли в качестве «профессиональной» АПК, участвующей в поддержании иммунной памяти.
HLA-DR также может присутствовать на клетках эпителия тимуса, на клетках В-лимфоцит-зависимых полей селезенки и лимфатических узлов, В-клеточной лимфомы. Этот антиген имеет коэкспрессию с CD1а антигеном на клетках Лангерганса.
CD25
Антиген CD25 известен как низкоаффинный рецептор ИЛ2, имеющий молекулярную массу 55 кД.
Молекула CD25, ассоциированная с b-цепью (CD122) и общей g-цепью (CD132), формирует высокоаффинный комплекс рецептора ИЛ-2. В процессе воспаления может вырабатываться растворимая форма ИЛ-2R. Маркер CD25 присутствует на субпопуляцях Т- и В-лимфоцитов периферической крови, в том числе на активированных макрофагах, НK. Его экспрессия резко возрастает при активации ФГА и КонА на поверхности CD3-активированных Т-лимфоцитов, на Т-клетках из смешанной культуры лимфоцитов, на инфицированных HTLV Т-лимфоцитах лейкемической линии при Т-лимфоцитарной лейкемии.
Метод позволяет определить количественное соотношение основных популяций Т-лимфоцитов:
малые клеточные популяции, а также изучить их функциональную активность:
Когда назначается исследование?
Являясь реальными супрессорами, Т-регуляторные клетки играют ведущую роль во многих иммунологических процессах: регулируют Т-клеточный гомеостаз, предотвращают аутоиммунные заболевания, аллергии, гиперчувствительность, реакцию «трансплантат против хозяина». Вместе с тем регуляторные Т-клетки снижают противоопухолевый иммунитет и иммунитет к инфекциям.
Особый интерес представляют исследования, связанные с изучением соотношения аутоактивных клонов В-клеток и регуляторных Т-клеток при различной патологии воспалительного генеза. Так, при осложненном течении ряда патологических воспалительных процессов сохранение высокого уровня Т-reg и В1- клеток к 30-м суткам характеризует сохранение напряженности воспалительного процесса и, возможно, начало формирования дефекта функционирования Т-reg клеток, которое впоследствии может привести к хронизации воспаления и к развитию аутоиммунного процесса.
Таким образом, наличие и количественные характеристики этой популяции служат важным диагностическим признаком.
Рекомендовано для комплексного обследования пациентов, входящих в группу риска по четырем основным иммунопатологическим синдромам.
С инфекционным синдромом:
С аллергическим (атопическим) синдромом:
С аутоиммунным синдромом:
С иммунопролиферативным синдромом:
Что означают результаты?
Изменения различных клеточных популяций лимфоцитов в сторону повышения или понижения развиваются при различных патологических процессах в организме, таких как инфекции, аутоиммунные и онкологические заболевания, иммунодефициты, в постоперационном периоде, при трансплантации органов.
Ниже представлена таблица с клиническими ситуациями, которые могут приводить к изменениям в субпопуляционном составе лимфоцитов.
Субпопуляция лимфоцитов
Повышение показателя
Снижение показателя
• Острые и хронические инфекции;
• длительный прием лекарственных препаратов (особенно монотерапия);
• прием биологически активных добавок;
• интенсивные занятия спортом;
• Некоторые виды инфекций;
• алкогольный цирроз печени;
• прием иммуносупрессивных препаратов.
Т-хелперы (CD3 + CD4 + CD45 + )
• Ряд аутоиммунных заболеваний;
• отдельные Т-клеточные лейкозы;
• отравление солями бериллия.
• Иммунодефицитные состояния (основной лабораторный признак вторичного иммунодефицита);
• алкогольная болезнь печени;
• прием иммуносупрессивных препаратов или стероидов.
Т-цитотоксические лимфоциты (CD3 + CD8 + CD45 + )
• Некоторые вирусные инфекции;
• ряд Т-клеточных лейкозов;
• острая фаза аллергии;
• ряд аутоиммунных патологий.
• Некоторые виды аутоиммунных, аллергических заболеваний;
T-reg. (регуляторные Т-клетки (CD4+CD25brightCD45+)
(сахарный диабет 1-го типа, рассеянный склероз, ревматоидный артрит, аутоиммунный тиреоидит, неспецифический язвенный колит, болезнь Крона, миастения);
• аллергические заболевания (бронхиальная астма, атопический дерматит, пищевая аллергия).
Активированные Т-лимфоциты (CD3+HLA-DR+CD45+)
• алкогольный цирроз печени;
Не имеют диагностического значения.
В совокупности с клиническими данными, симптоматикой, другими методами лабораторных исследований вышеуказанные изменения являются диагностическим признаком возникновения этих патологических процессов в организме человека.
