Blautia
Blautia — род грамположительных анаэробных бактерий, резидентов толстой кишки человека.
Общей чертой бактерий рода Blautia является утилизация водорода и диоксида углерода с продукцией ацетатов (уксусной кислоты).
Бактерии рода Blautia являются одними из наиболее многочисленных микроорганизмов желудочно-кишечного тракта человека их число может достигать от 2,5% до 16% от общего числа микроорганизмов.
Наиболее часто и в заметном количестве в кишечнике здорового человека обнаруживают следующие виды рода Blautia: Blautia luti, Blautia obeum и Blautia wexlerae; эти три вида многие исследователи включают в так называемое филогенетическое ядро микробиоты толстой кишки человека (см. рисунок выше; данное исследование относится к английской популяции, но и в других популяциях наблюдается аналогичная картина).
Количество бактерий Blautia в желудочно-кишечном тракте уменьшается с возрастом человека, их число снижается у больных колоректальным раком. Наоборот, повышенные уровни Blautia spp. наблюдаются при синдроме раздражённого кишечника, однако предположительно, что последнее может отражать адаптацию экосистемы к увеличенному количество газов, продуцируемых Dorea spp., которые могут потребляться Blautia spp.
У больных сахарным диабетом типа 2 обнаружено повышенное содержание бактерий рода Blautia.
У страдающих болезнью Паркинсона содержание в кале бактерий рода Blautia значительно снижено по сравнению со здоровыми людьми (Толегенова И.Х.).
Представители рода Blautia выделяются из фекалий человека, мышей, собак и некоторых других млекопитающих.
Blautia в систематике бактерий
Род Blautia относится к семейству Lachnospiraceae, которое входит в порядок Clostridiales, класс Clostridia, тип Firmicutes, Terrabacteria group, царство Бактерии.
К роду Blautia относятся виды: Blautia caecimuris, Blautia coccoides, Blautia faecis, Blautia glucerasea, Blautia hansenii, Blautia hydrogenotrophica, Blautia luti, Blautia marasmi, Blautia massiliensis, Blautia obeum, Blautia phocaeensis, Blautia producta, Blautia provencensis, Blautia schinkii, Blautia stercoris, Blautia wexlerae.
Ранее вид Blautia coccoides относился к роду клостридии и назывался Clostridium coccoides, виды Blautia hansenii, Blautia hydrogenotrophica, Blautia luti, Blautia obeum, Blautia producta и Blautia schinkii относились к роду руминококков и назывались, соответственно, Ruminococcus hansenii, Ruminococcus hydrogenotrophicus, Ruminococcus luti, Ruminococcus obeum, Ruminococcus productus и Ruminococcus schinkii.
Влияние употребления красного вина на микробиом человека
Полифенолы, вещества растительного происхождения, присутствуют в питании практически каждого человека, содержатся в чае, кофе, вине, фруктах, овощах и шоколаде в наибольшем количестве. В процессе переваривания пищи в тонкой кишке и включения в печеночно-кишечную циркуляцию выделяемые из нее полифенолы практически не подвергаются изменениям, поступая в интактном виде в толстую кишку. Здесь олигомеры полифенолов взаимодействуют с кишечной микрофлорой. Jung CM et al., а затем и Rodríguez Vaquero MJ. et al. показали, что полифенолы обладают противовоспалительным эффектом. Данные вещества обладают антимикробной активностью и, связываясь с мембранами бактериальных клеток, способны ингибировать их рост и развитие. Таким образом, дальнейшей задачей для исследования было выяснить, способны ли эти вещества вносить изменения в кишечный микробиом и работать как пребиотики. Решением данного вопроса занялись ученые из США.
Методы
В исследование включены 10 здоровых мужчин в возрасте 45-50 лет. Условием включения было, в том числе, отсутствие приема антибиотиков, пробиотиков, пребиотиков или витаминов в ближайшие 3 месяца перед началом исследования. Далее выполнено рандомизированное проспективное исследование. После 15-дневного периода полного воздержания от алкоголя, участники последовательно принимали красное вино с предварительным удалением оттуда алкоголя (272 мл/день), красное вино с наличием в нем алкоголя (272 мл/день), и джин (100 мл/день) в течение 20 дней каждый. Каждому участнику выполнены анализы кала на ПЦР для определения ДНК бактерий в кале. Также происходил забор биохимического анализа крови на уровень альбумина, глюкозы, C-реактивного белка, липидный спектр (триглицериды, ЛПНП, общий холестерин); регулярно измерялось артериальное давление. В моче после суточного сбора определялся уровень полифенолов, а именно ресвератола и его метаболитов при употреблении красного вина без алкоголя и этилглюкуронида при употреблении обычного красного вина.
Результаты
Состав кишечного микробиома изменялся на протяжении всего исследования. В сравнении с начальным периодом, в котором прием алкоголя был исключен, прием вина привел к существенному увеличению количества бактерий групп Enterococcus, Prevotella, Bacteroides, Bifidobacterium, Bacteroides uniformis, Eggerthella lenta, and Blautia coccoides–Eubacterium rectale (P
Blautia coccoides повышены в крови что это значит у женщин
Из не опубликованного
ОБНАРУЖЕНИЕ МАРКЕРОВ НЕКУЛЬТИВИРУЕМЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ В ТКАНЯХ ВНУТРЕННИХ ПОЛОВЫХ ОРГАНОВ
Анализ и аналитическое описание Осипова Г.А.
По данным из научной литературы, воспалительные процессы внутренних половых органов составляют 62,5% в структуре гинекологической заболеваемости, причем у 9,5% женщин диагностируют гнойные воспалительные заболевания маточных труб и яичников.
Отмечается, что инфекционные заболевания редко вызываются одним возбудителем, и также возрастает роль условно-патогенных возбудителей. Смешанные инфекции составляют примерно 20-30% в структуре инфекционных заболеваний нижнего отдела половых путей, т.е. почти у каждой третьей пациентки выявляется инфекционный процесс, вызванный несколькими возбудителями. В таких случаях клинические проявления заболевания нетипичны и определяются характером взаимодействия между различными возбудителями, приводящим к угнетению или стимуляции одного вида микроорганизма другим. Гнойные воспалительные заболевания придатков матки относят к смешанным полимикробным инфекциям, важнейшими возбудителями которых, по данным Всемирной организации здравоохранения, являются анаэробно-аэробные микроорганизмы (42,5%), Neiseria gonorrhoeae (37,5%), Chlamydia trachomatis (27,5%), Mycoplasma hominis (до 15%) и др. В последние годы именно анаэробной инфекции уделяют особое внимание, поскольку она приобретает реальную значимость в клинической практике. При острых хронических воспалительных заболеваниях придатков матки и околоматочного пространства наиболее часто (82,5%) выделяют облигатные анаэробные микроорганизмы. По данным В.И. Удовиченко и соавт. (1997), 80% женщин из числа гинекологических больных, обращающихся в женскую консультацию с различными видами вульвовагинитов, цервицитов, уретритов, имеют смешанную бактериально-грибково-трихомонадную инфекцию.
Большинство патогенных организмов являются компонентами нормальной микрофлоры человека, этот факт подтверждает эндогенный путь трансмиссии инфекции. Подавляющее большинство воспалительных заболеваний органов малого таза обусловлено собственной условно-патогенной микрофлорой, ведущая роль в развитии которых принадлежит наиболее вирулентным анаэробам, энтеробактериям и коккам (Сидорова, 2007). В микрофлоре влагалища могут присутствовать гнилостные бактерии родов Bacillus, Proteus, Clostridium, Spirochaeta. По данным Wilkins M.et.al, 1984, количество анаэробов преобладает над аэробами в 10 раз в микробиоценозе вагины.
В свете этих данных представляет интерес изучение состава микробных сообществ матки и придатков, включающих в себя как нормальную, условно-патогенную, патогенную микрофлору. Изучение состава микрофлоры УГТ в норме и патологии в динамике может позволить оценить иммунологический, гормональный статус и гомеостаз макроорганизма. Знание микробных взаимоотношений помогают врачу определить истинную причину инфекционного процесса и подбирать адекватную терапию.
Участие в этом сообществе бактерий, относящихся к разным родам и группам, а также простейших делает затруднительным анализ состава этого сообщества традиционными методами, включающими микробиологический метод селективных сред с биохимическими тестами, и генетическими методами. Традиционные методы идентификации микроорганизмов не являются универсальными и требуют часто длительного времени исполнения.
На этом фоне выглядит перспективным выявление специфических веществ (маркеров) — структурных компонентов микроорганизмов — на фоне биологических жидкостях организма человека, и использование их состава для индикации микроорганизмов с помощью метода газовой хроматографии и масс-спектрометрии (ГХ-МС). Методом ГХ-МС с высокой точностью и чувствительностью определяется качественный и количественный состав микробиоценозов в экологии и медицине по жирным кислотам, оксикислотам, альдегидам и стеринам мембран клеток микроорганизмов и их профилям, относящимся к определенным видам сообщества. Метод детектирования микроорганизмов по ЖК-маркерам сродни генетическому (ПЦР, определение последовательности нуклеотидов 16sРНК, FISH и пр.), поскольку состав жирных кислот детерминирован в ДНК и воспроизводится путем репликации участка генома транспортными РНК и последующего синтеза ЖК по матричным РНК (Уотсон, Молек биол клетки, 5т). Поэтому профиль ЖК бактерий является их визитной карточкой или фингерпринтом как отпечатки пальцев людей (Митрука, 1978). Он так же консервативен, как строение ДНК, но и так же подвержен мутациям под действием факторов окружающей среды. Стабильность набора жирных кислот, составляющих клетки микробов, подтверждается исследованиями в области бактериальной палеонтологии, которые показывают, что до глубины времен в 2,5 млрд лет состав ЖК отдельных микробов и пула их жирных кислот в целом остается постоянным (Shekhovtsova, 2003).
Ранее описаны примеры обнаружения микроорганизмов при инфекционных процессах методом ГХ-МС, в том числе для анализа вагинальной микрофлоры [32] [Вестник РАМН, 1996, № 2]. В результате исследование состава жирных кислот вагинального содержимого показано, что его минорные компоненты относятся к микроорганизмам, колонизирующим половые органы в норме и патологии. Оценена их диагностическая значимость при микробной диагностике хронических вагинитов (Крымцева, 2003, Осипов, 2005).
В настоящей работе этот метод применен для исследования инфекционной составляющей патологического процесса эндометрия матки, приводящего к необходимости оперативного решения проблемы вынашивания плода. Целью исследования является выявление и определение в послеоперационном материале численности анаэробов и других, редко культивируемых микроорганизмов, наряду с традиционными объектами клинической микробиологии.
Методы
В основной группе больных исследованы 24 соскобов из полости матки от пациенток, перенесших операции по поводу проблем беременности.
Режим анализа подробно описан ранее (Осипов, 2010; Годков, 2011). Коротко, он состоит в следующем. Материал в количестве 0,04 г подвергали кислому метанолизу в 0,4 мл 1,2 М HCl в метаноле в течение 45 мин при 80°С. В результате реакции метанолиза жирные кислоты, входящие в состав сложных липидов пробы освобождаются в виде метиловых эфиров. Их экстрагировали в 400 мкл гексана, экстракт высушивали и обрабатывали в 20 мкл N,О-бис(триметилсилил)-трифторацетамида в течение 5 мин при 80 °С для получения триметилсилильных эфиров гидрокси-кислот и стеролов. Смесь эфиров в количестве 2 мкл вводили в инжектор ГХ-МС системы HP-5880/5975 Agillent Technologies (США) в модификации «Микробиологический анализатор «МАЭСТРО» ООО Интерлаб (Россия). Для управления и обработки данных использовали штатные
программы прибора. Хроматографическое разделение пробы осуществляли на капиллярной колонке с метилсиликоновой привитой фазой HP-5ms Agillent Technologies. Длина колонки 25м, внутренний диаметр 0.25 мм. Режим анализа — программированый, скорость нагрева термостата колонки — 5 град/мин в диапазоне 130 — 320°С.
Площади пиков маркеров на масс-фрагментограммах интегрировали автоматически по заданной программе. Затем эти данные вводили в программу расчета, подготовленную в электронных таблицах EXCEL по технологии масс-спектрометрии микробных маркеров (МСММ, Разрешение Росздравнадзора ФС 2010/038 от 24.02.2010) (Осипов, 2010). Для количественного расчета использовали дейтерированную тридекановую кислоту в качестве внутреннего стандарта и собственный банк данных состава жирных кислот клинических изолятов микроорганизмов.
Ошибка количественных измерений численности микроорганизмов из-за погрешности в подготовке проб и анализа, несоответствия состава жирных кислот чистых культур банка данных и изучаемого сообщества in situ может составлять 20%.
Метод характеризуется следующими показателями:
· Определение более 50 микроорганизмов одновременно в одном анализе
· Время анализа – 2,5 часа
· Чувствительность 103-104 клеток в пробе
· Селективность – до вида при наличии маркера
· Анализ непосредственно в материале без высевания или подращивания микроорганизмов
· Не требует биологических и биохимических тестовых материалов – культуральных сред, ферментов, тестовых субстратов, праймеров и т.п.
Результаты измерения концентраций микробных маркеров в соскобах матки с последующей реконструкцией микробного сообщества позволили определить состав микст-инфекции в очаге поражения (табл 1).
Результаты анализа состава локальной микст-инфекции в соскобах из полости матки (N=24). Данные в размерности [клеток/мл х105]
Из 54 таксонов микроорганизмов, контролируемых в процессе анализа, в итоговую таблицу выведены 48, из которых 38 показывают избыточный рост (инфекцию), Клинически значимыми считали более чем двойное превышение нормы на основании статистического распределения концентрации маркеров микроорганизмов у больных и здоровых людей (Белобородова, 1999). Такие изменения отмечены в таблице затенением клетки. Как видно, инфицирование каждого исследованного материала включает несколько (до двадцати двух, Пожарская, GBT-1559) таксонов микроорганизмов. Это подтверждает тезис литературного обзора о смешанном характере инфекции половых органов женщин. Данные таблицы 1 подтверждают также сформировавшееся представление о доминировании анаэробов. Их доля составляет 70-90% по нашим измерениям и соответствует оценке других авторов. В отличие от предыдущих работ наши измерения носят количественный характер, что позволяет выявить микробные доминанты воспалительного процесса на одной и той же пробе инфицированного материала, а также сопоставлять данные анализов разных пациентов. В данном случае доминантами у большинства пациентов оказались бактерии видов Propionibacterium/Cl. subterminale, представителей родов Eubacterium, Clostridium, Lactobacillus, Ruminococcus. Такой тип инфекции показан на рис 1, где в графическом выражении лучше иллюстрируется количественные изменения относительно нормы и других составляющих микробного сообщества. За неимением возможности оценить уровень колонизации слизистых оболочек полости матки и придатков у здоровых женщин, мы приняли в качестве максимально возможного уровня данные нормы по крови. Тем более, что проба носит явно насыщенный кровяной характер.
По кратности превышения нормы выделяются бактерии кишечной группы (рис 1), для которой наблюдается многократное увеличение концентрации маркеров клостридий группы Clostridium ramosum, групп Eubacterium/Cl. сoccoides, Propionibacterium/Cl. subterminale в соскобе из полости матки по сравнению с их уровнем в крови в норме. Пересчетное значение численности этих микроорганизмов по технологии МСММ достигает уровня 10 9 – 10 10 клеток\мл. Расчетная численность C. ramosum в десяти случаях превышает норму в десять-двадцать раз. Из трудно культивируемых микроорганизмов, которые позволяет выявить масс-спектрометрический метод, следует отметить еще анаэробы Streptococcus mutans, численность которых в 11 пробах более 5 раз выше нормальной. В большинстве случав в составе микст-инфекции присутствуют анаэробные актинобактерии Actinomyces viscosus.
Число случаев более чем двукратного превышения расчетной численности микроорганизмов соскобах из полости матки по сравнению с нормой крови
| № | Микроорганизм | Число клин. значимых | в % | Максимальная численность | Максимальное превышение нормы, раз | Найдено в бакпосеве, КОЕ |
| 1 | Streptococcus | 3 | 13 | 1.1×10 8 | 4,5 | |
| 2 | Eubacterium lentum | 22 | 96 | 1.8×10 9 | 271,3 | |
| 3 | Clostridium hystolyticum | 5 | 22 | 7×10 7 | 7,5 | |
| 4 | Peptostreptococcus anaerobius | 8 | 35 | 9×10 5 | 9,0 | |
| 5 | Acinetobacter | 19 | 83 | 9,5×10 6 | 9,5 | |
| 6 | Pseudomonas aeruginosa | 23 | 100 | 2,3×10 6 | 22,0 | |
| 7 | Clostridium propionicum | 3 | 13 | 3,7×10 8 | 14,0 | |
| 8 | Stenotrophomonas maltophilia | 3 | 13 | 2×10 5 | 2,0 | |
| 9 | Актиномицеты | 3 | 13 | 3,6×10 7 | 4,7 | |
| 10 | Streptomyces | 6 | 26 | 4,9×10 7 | 7,9 | |
| 11 | Clostridium ramosum | 21 | 91 | 4.1×10 9 | 20,5 | |
| 12 | Haemophylus/Burkholderia | 23 | 100 | 7,6×10 6 | 76,0 | |
| 13 | Alcaligenes | 14 | 61 | 3,1×10 7 | 6,4 | |
| 14 | Rhodococcus | 5 | 22 | 2,7×10 8 | 6,3 | |
| 15 | Corineform CDC-group XX | 1 | 4 | 1.3×10 8 | 2,1 | |
| 16 | Lactobacillus | 6 | 26 | 3.1×10 9 | 4,8 | |
| 17 | Campylobacter mucosalis | 1 | 4 | 2,2×10 7 | 2,2 | |
| 18 | Candida | 2 | 9 | 1.4×10 8 | 2,5 | |
| 19 | Clostridium 12:0group* | 8 | 35 | 1.7×10 8 | 6,8 | |
| 21 | Грибы (Aspergillus-тип) | 4 | 17 | 7,4×10 7 | 6,8 | |
| 22 | Prevotella/Burkholderia | 1 | 4 | 1.3×10 7 | 3,4 | |
| 23 | Eubacterium/Cl. Coccoides | 20 | 87 | 1.6×10 10 | 23,1 | |
| 24 | Staphylococcus | 17 | 74 | 1.3×10 8 | 11,2 | |
| 25 | Bifidobacterium | 3 | 13 | 1.6×10 9 | 3,1 | |
| 26 | Helicobacter pylory | 13 | 57 | 1.2×10 7 | 8,5 | |
| 27 | Clostridium perfringens | 11 | 48 | 7,3×10 6 | 6,1 | |
| 28 | Enterococcus | 1 | 4 | 1.3×10 8 | 4,5 | |
| 29 | Propionibacterium/Cl. subterminale | 19 | 83 | 8,7×10 9 | 19,5 | |
| 30 | Streptococcus mutans (анаэробные) | 19 | 83 | 5,6×10 8 | 24,7 | |
| 31 | Herpes | 16 | 70 | 1.1×10 8 | 18,1 | |
| 32 | Nocardia asteroides | 14 | 61 | 4.1×10 8 | 15,0 | |
| 33 | Ruminicoccus | 8 | 35 | 6,6×10 8 | 10,3 | |
| 35 | Blautia coccoides | 7 | 30 | 1.6×10 7 | 15,7 | |
| 36 | Kingella | 3 | 13 | 1.0×10 7 | 10,0 | |
| 37 | Actinomyces viscosus | 9 | 39 | 1.5×10 9 | 12,5 |
Здесь под C. ramosum подразумевается целая группа клостридий, объединенная общим маркером – специфической ненасыщенной жирной кислотой ω9-гексадеценовой. Это C. inocuum, C. clostridieforme, C. subterminale, C. sordellii, C. septicum, C. paraputrificum, C. celatum, C. cochlearium, C. limosum, C. fallax, C. difficile. Другая группа Clostridium 12:0group имеет общий маркер – додекановую кислоту и (С12:0) и включает виды Clostridium perfringens, С. putrefacience, C. hystolyticum, C. tetani. Свои маркеры имеют клостридии других видов: C. histolyticum, C. coccoides вместе с большой группой родственных эубактерий (род Eubacterium), а также C. propionicum, C. perfringens и C. subterminale вместе с частью видов Propionibacterium. В сумме клостридии составляют около 74% микробного сообщества, то есть, как принято в хирургии, это анаэробная клостридиальная инфекция (АКИ).
По данным реконструкции микробного сообщества эндометрия по маркерам в соскобе из полости матки численность ряда микроорганизмов многократно превышает таковую в крови той же пациентки (Рис 2). Основываясь на данных предыдущих исследований методом МСММ (Лазебник, 2008; Прохорова, 2012) мы полагаем, что имеет место транслокация микроорганизмов кишечника по крови и/или восходящая инфекция из вагины с последующим размножением уже в самом органе – матке.
Рис.2. Сравнение состава реконструкции микробного сообщества в соскобе матки и крови одной и той же пациентки методом МСММ.
Таким образом, применение метода масс-спектрометрии микробных маркеров позволило дополнить картину инфицирования верхних половых органов женщин таксонами, которые оказались доминирующими в микробном сообществе, а также расширить список участников инфекционного процесса. Ими оказались, как и предполагалось другими исследователями, представители кишечной микробиоты. Кроме того, в отличие от предыдущих исследований, мы дали их количественную оценку, показав рейтинговый ряд агентов инфекции и подтвердив доминирование анаэробов родов Propionibacterium, Eubacterium, Clostridium и Bifidobacterium. Вряд ли следует сразу зачислять в патогенны доминантные микроорганизмы кишечной микробиоты: бифидобактерии, лактобациллы,эубактерии и пропионобактерии. Также оставим за скобками клостридии группы C. ramosum, поскольку их роль в организме явно выглядит двоякой. Пока не будем осложнять задачу их транслокацией в полость матки. Попробуем выделить явных патогенов.
Для этого исключим из таблицы перечисленные выше кишечные доминантные бактерии и микробы, которые в норме, и оставим те, что превышают норму, а также те, что часто встречаются в бакпосеве – для возможного сопоставления.
Тогда для соскоба GBT-1559 получим следующую сокращенную таблицу (рис 3):
Рис. 3. Наиболее вероятные агенты инфекции эндометрия, за исключением микробов, доминирующих в микробиоте кишечника.
Это реальные кандидаты в агенты инфекции, которая препятствуют нормальному протеканию беременности.
Если посмотреть в таком ключе остальные анализы соскобов, то будет видно, что везде такими агентами являются обязательно Clostridium perfringens, H. pylori, одна или несколько актинобактерий родов Streptomyces, Nocardia, Pseudonocardia. В примере на рисунке 3 это Actinomyces viscosus, Nocardia asteroids и Rodococcus. В этой группе известные разрушители клеток животных. Они обнаружили себя в амбулаторной практике в качестве агентов, препятствующих оплодотворению и развитию яйцеклетки в плод, в том числе при экстракорпоральном оплодотворении.
Тем не менее, нельзя исключать участие в патогенезе и «хороших» бактерий: лактобацилл, бифидобактерий, пропионобактерий и части клостридий. Можно найти десятки документированных случаев участия в инфекционном процессе любого микроба, обитающего в теле человека. В том числе лактобацилл и бифидобактерий. Особенно лактобациллл. Действительно, по литературным данным они зафиксированы как возбудители при эндокардите, бактериемии, бактериурии, перитонитах, абсцессах и менингитах. Наиболее часто выявляются L. casei и L. rhamnosus (Cannon, 2005). Eubacterium – родственные клостридиям микроорганизмы, являющиеся одними из основных обитателей кишечника. Условные патогены с развитой системой видов и штаммов с универсальными свойствами. Эубактерии участвуют в качестве основных агентов во многих воспалительных процессах и синдромах: воспаления неизвестной этиологии, себорея, атопический дерматит, кахексия, воспаление кишечника, глютеновая энтеропатия, воспаление десен, средиземноморская семейная лихорадка, Yang Xiao-xia’s “mysteriuos disease”, синдром раздраженного кишечника, воспаление легких, бактеремия, хронический синусит, болезнь Крона, периодонтит, артрит, простатит, муковисцидоз, эндометрит, эндокардит, неспецифический вагинит, врожденный порок сердца и другие. Основными функции эубактерий в организме человека являются: образование водорода, высвобождение гистамина, биотрансформация желчных кислот, индуцирование продукции провоспалительных цитокинов и TNF-alfa, а также противовоспалительного цитокина IL-10 (как ЛПС или клеточные токсины Грам+ патогенов) и другие. Патогенность клостридий более известна в клинической практике. Они обладают широким набором экзотоксинов. У C.perfringens их насчитывается двенадцать. С. ramosum обладает близкой активностью, в том числе также может вызывать газовую гангрену, язвенный и некротизирующий колиты. Они известны как агенты септицемии, нефропатии, бактериемии и менингита (Brook, 1995; в Атласе, 2003).
Анкирская А. С. Бактериальный вагиноз. Акушерство и гинекология. №3 2005 с. 10-13
Анкирская А.С., Прилепская В.Н., Байрамова Г.Р. Бактериальный вагиноз: особенности клинического течения, диагностика и лечение. // Рус мед журнал, 1999; 5: 276–82.
Атлас по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии. Под ред А.А. Воробьева и А.С. Быкова. – М., Медицинское информационное агентство, 2003. – 236 с.: ил.
Годков М.А., Осипов Г.А., Федосова Н.Ф., Лядов К.В. Возможности масс-спектрометрии микробных маркеров в лабораторном мониторинге дисбиозов и инфекций. Справочник заведующего КДЛ. 2011, № 7, С. 35-44.
Лазебник Л.Б., Винницкая Е.В., Осипов Г.А. Дроздов В.Н., Петраков А.В. Новые подходы к диагностике спонтанного бактериального перитонита при циррозе печени. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. №2. 2008. стр. 32-39.
Крымцева Т.А., Осипов Г.А., Бойко Н.Б., Соколов Я.А., Демина А.М., Радюшина Т.В., Осипов Д.Г.. Минорные жирные кислоты биологических жидкостей урогенитальных органов и их значимость в диагностике воспалительных процессов. Журн. Микроб. Эпидем. Иммун. 2003, № 2: 92-101
Митрука Б.М. Применение газовой хроматографии в микробиологии и медицине. М. Медицина, 1978.
Муравьева В. В. Микробиологическая диагностика бактериального вагиноза у женщин репродуктивного возраста // Дисс. Канд. мед. наук., Москва, — 1997.
Осипов Г.А. Хромато-масс-спектрометрический анализ микроорганизмов и их сообществ в клинических пробах при инфекциях и дисбиозах. / В книге: Химический анализ в медицинской диагностике.- М.: Наука, 2010.- С.293-368.
Осипов Г.А., Крымцева Т.А., Осипов Д.Г., Столярова О.Н. Функциональные изменения жирнокислотного состава урогенитальных жидкостей организма человека при дисбиозах. Прометей. Москва, 2005
Прохорова Е. С., Выборнов Д.Ю., Бойко Н.Б., Федосова Н.Ф., Лядов К.В., Осипов Г.А. Изучение эндогенного пути инфицирования посттравматических артритов у детей с применением масс-спектрометрии микробных маркеров. Детские инфекции. 2012, том 11, № 1, С. 55-60
Journal of General Microbiology (1990), 136, 241-247.
JP Cannon, TA Lee, JT Bolanos, and LH Danziger. Pathogenic relevance of Lactobacillus: a retrospective review of over 200 cases. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, January 1, 2005; 24(1): 31-40
Shekhovtsova N.V., Osipov G.A., Verkhovtseva N.V., Pevzner L.A. Analysis of lipid biomarkers in rocks of the Archean crystalline basement //Proceedings of SPIE.- 2003.- Vol.4939.- P. 160 – 168
Wilkins M., Thin R. N., Tabaqchall S. Quantitave bacteriology of the vaginal flora in genital disease // J. Med. Microbiol. 1984, 18:2, 217-231.
В этом можно усматривать специфику инфицирования внутренних половых органов, так как при вагинитах в слизистой влагалища их рост хотя и происходит, но не в такой степени. Для вагины более характерна инфекция Clostridium perfringens. При воспалениях, напоминающих по клиническим проявлениям кандидоз, их численность до 30 крат превышают уровень колонизации слизистой оболочки в норме.
Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, Том 3, N 1, 2001
стр. 39-47
Экологические аспекты чувствительности к антибиотикам анаэробных бактерий
М. Качерес 1,2 , К.Э. Норд 1 , А. Веинтрауб 1
